产品别名 |
絮凝剂,阳离子聚丙烯酰胺,聚丙烯酰胺 |
面向地区 |
品牌 |
开碧源 |
|
型号 |
PAM |
PH值使用范围 |
7-14 |
CAS |
9003-05-8 |
化学成分 |
聚丙烯酰胺 |
名称 |
聚丙烯酰胺 |
含量 |
0.98 |
外观 |
白色颗粒 |
执行质量标准 |
国标 |
目数 |
40-70目 |
是否进口 |
否 |
唐山销售污泥脱水絮凝剂30/40/50阳离子聚丙烯酰胺价格
聚丙烯酰胺分离胶凝固好后,倒掉覆盖在分离胶表面的正丁醇,并用去离子水冲洗一次,倒置吸净残留的水。将配制好的浓缩胶液灌注入胶管内(约15mm),在凝胶表面轻轻加一层正丁醇液(约3~4mm),用于隔绝空气,使胶面平整。室温下静置约30~60min。观察胶和正丁醇之间的界面,判断胶是否凝固。胶凝固好后,倒掉覆盖在胶表面的正丁醇,并用去离子水冲洗一次,倒置吸净残留的水,准备加样。聚丙烯酰胺样品预处理和加样 取血清0.1ml、上样缓冲液0.9ml,混匀,在沸水中煮沸5min。将胶管封底去掉,放入圆盘电泳槽中,套紧,不能有空的孔,将Tris-甘氨酸电泳缓冲液加入圆盘电泳上、下槽中,电泳缓冲液要盖过胶管口,然后用微量加样器(或注射器)将样品10μl加到胶管胶面内。电泳 上槽接负极,下槽接正极,先调电压为120v/浓缩胶,开始电泳,当指示染料进入分离胶后,将电压增加到80v/分离胶胶,继续电泳直至染料抵达距分离胶下端约1cm处,停止电泳,断开电源。电泳时间约1.0~1.5h。电泳结束后,取出电泳胶管,用长注射器针剥胶,一边注水一边推胶,直至胶出。将胶移至大培养皿中,量取并记录凝胶长度和指示染料的迁移距离(分离胶上缘到染料条带中心距离),然后将凝胶板浸入考马斯亮蓝染色液中0.5-1h,再用脱色液脱色1~2天,至背景无色为止。区带可作定性或定量分析。校正曲线的数据处理和分子量测定 量取并记录染色后凝胶长度、各标志蛋白质和各待测蛋白质区带的迁移距离(分离胶上缘到各蛋白质区带中心)。按下式计算各蛋白质的相对迁移率(Rm值)。
聚丙烯酰胺使用注意事项
1.制胶过程中用正丁醇封住胶面是为了阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制作用。2.本法也适合于其他生物样品中蛋白质的分析。上样量不宜过大,否则会出现过载现象。尤其是考马斯亮蓝R250染色,在蛋白质浓度过高时,染料与蛋白质的氨基(-NH)形成的静电键不稳定,其结合不符合Beer定律,使蛋白质量不准确。3.Acr和Bis有神经毒性,可经皮肤、呼吸道等吸收,故操作时要注意保护。在半对数纸上,以各标志蛋白质的Rm值为横坐标(普通尺度),相应的分子量为纵坐标(对数尺刻度)作图,即得分子量校正曲线。根据各待测蛋白质的Rm值,查此校正曲线,可求各待测蛋白质的相对分子量。先将胶管(5х90mm)封好底,将配制好的分离胶液灌注入胶管内,约70mm高度(掌握分离胶的高度),在凝胶表面轻轻加一层正丁醇液(约3~4mm)。用于隔绝空气,使胶面平整。室温下静置约30~60min。观察胶和正丁醇之间的界面,判断胶是否凝固。要在确认分离胶凝固后才开始配制浓缩胶。
聚丙烯酰胺在制胶过程中用正丁醇封住胶面是为了阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制作用。本法也适合于其他生物样品中蛋白质的分析。上样量不宜过大,否则会出现过载现象。尤其是考马斯亮蓝R250染色,在蛋白质浓度过高时,染料与蛋白质的氨基(-NH)形成的静电键不稳定,其结合不符合Beer定律,使蛋白质量不准确。Acr和Bis有神经毒性,可经皮肤、呼吸道等吸收,故操作时要注意保护。制胶过程中用正丁醇封住胶面是为了阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制作用。本法也适合于其他生物样品中蛋白质的分析。上样量不宜过大,否则会出现过载现象。尤其是考马斯亮蓝R250染色,在蛋白质浓度过高时,染料与蛋白质的氨基(-NH)形成的静电键不稳定,其结合不符合Beer定律,使蛋白质量不准确。Acr和Bis有神经毒性,可经皮肤、呼吸道等吸收,故操作时要注意保护。制胶过程中用正丁醇封住胶面是为了阻止空气中的氧气对凝胶聚合的抑制作用。本法也适合于其他生物样品中蛋白质的分析。上样量不宜过大,否则会出现过载现象。尤其是考马斯亮蓝R250染色,在蛋白质浓度过高时,染料与蛋白质的氨基(-NH)形成的静电键不稳定,其结合不符合Beer定律,使蛋白质量不准确。Acr和Bis有神经毒性,可经皮肤、呼吸道等吸收,故操作时要注意保护。